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实时荧光定量PCR技术全面分析ppt课件

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实时荧光定量PCR技术全面分析ppt课件

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实时定量PCR技术 目录 实时定量PCR基本原理 实时定量PCR的实验设计和数据处理 实时定量PCR两种相对定量方法比较 实时定量PCR实验实例分析 实时定量PCR常见故障排查 实时定量PCR的新应用 实时定量PCR基本原理 常规vs实时 常规PCR:借助电泳对扩增反应的终产物进行半定量及定性分析 定量PCR技术:利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,最终精确的对起始模板的定量分析 常规vs实时 优缺点比较 定量PCR三个基本概念 扩增曲线 阈值与C(t)值 阈值:是循环开始3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍,设定在扩增曲线指数增长期 C(t)值:荧光信号(扩增产物)到达阈值时所经过的扩增循环次数 定量PCR的数学原理 理想的PCR反应: Xn=X0×2n 非理想的PCR反应: Xn=X0(1+Ex)n 方程式两边同时取对数得: log Xn=log (X0 (1+Ex)n) 整理方程式得: log X0= (- log(1+Ex) )×n+ log Xn 将C(t)和达到C(t)值时终产物的量Xc(t)带入上式得: log X0= (- log(1+Ex) ) ×C(t)+ log Xc(t) 初始浓度的对数与循环数呈线性关系 C(t)与初始模板含量 初始模板量越多,C(t)值越小 C(t)与初始模板浓度的对数值成线性关系 定量原理 浓度的对数值与循环数呈线性关系,根据样品扩增达到域值的循环数(Ct值)就可分析样品中起始模板量 化学原理 化学方法分类 非特异性 SYBR Green I法 特异性 TaqMan探针法 SYBR Green I法 结合双链DNA分子小沟 延伸结束,形成双链DNA,SYBR Green结合到双螺旋小沟中,当受到适合光源激发,发射出荧光,反映产物浓度 优点 使用方便,无需复杂的设计 成本较低 缺点 与非特异性产物结合,无模板特异性 试验方法较难优化 灵敏度低 TaqMan探针法 水解型 报告基团,淬灭基团 FRET(荧光谐振能量传递) 识别特异性产物 优点 特异性高,可准确定量 灵敏度高 设计不同标记的探针,可进行多重检测 缺点 一个探针只适用于一个目标 价格较高 探针设计较繁琐 两种化学的比较 定量PCR的实验设计和数据处理 绝对定量与相对定量 绝对定量与相对定量 绝对定量:精确的计算初始反应的模板浓度(DNA,RNA) 相对定量:计算初始反应模板的相对含量 定量PCR--绝对定量 标准品,标准曲线 已知浓度的相应DNA模板,按不同浓度稀释 根据实时PCR反应得到相应的C(t),构建标准曲线 样品 与标准品同时进行PCR反应得到未知浓度样品的C(t)值 使用定量PCR进行绝对定量的优势 敏感性高 检测低拷贝数样品:单拷贝 大范围拷贝数样品同时检测 100—1010 省时有效 定量PCR--相对定量 相对定量的目的 比较基因在不同情况下的表达差异(倍数关系) 相对定量的问题 样品材料不均一造成的差别 内标基因 内标通常是b-actin、GAPDH、18SrRNA等看家基因(内标基因的表达要相对恒定,表达不受处理因素影响) 对目的基因进行均一化:去除样本间加样量不同带来的误差 SYBR Green I法进行相对定量的问题 熔链曲线分析 在PCR反应程序结束后,逐步提高温度,读取荧光值,得到温度与荧光值的关系曲线 熔链曲线分析 决定退火温度 实时定量PCR两种相对定量方法比较 相对双标准曲线法和2-ΔΔc(t) 法 相对标准曲线法 用目标基因和内标基因的标准品分别获得标准曲线 处理与未处理样品同时扩增目标基因和内标基因,获得C(t)值 用内标基因对目标基因均一化 处理样本与未处理样本目标基因C(t)值经内参基因均一化后相除,即可得出处理样本与未处理样本的表达差异 适用范围 目标基因与内标基因扩增效率差异较大 扩增效率较低 2-ΔΔc(t) 法 公式推导 M:目标基因,N:内标基因 XC(t)M=X0M*2C(t)M=A(域值) (1) XC(t)N=X0N*2C(t)N=A(域值) (2) 均一化 (1)/(2): X0M/X0N=2 C(t)N- C(t)M=2-ΔC(t) 处理2与处理1相比:  (X0M2/X0N2): (X0M/X0N)= 2-ΔC(t)2-ΔC(t)1=2-ΔΔC(t) ΔΔC(t)=(C(t)M2-C(t)N2)-(C(t)M1-C(t)N1) 当有多个样品时(如时间点),各样品均一化后都与同一时间点相比 一般步骤 选定目标基因和内标基因 设计一步法或两步法RT-PCR反应 数据获得及处理 目标基因C(t)值(处理,未处理) 内标基因C(t)值(处理,未处理) 计算2-ΔΔc(t) 作图 适用范围 当扩增效率较高,且目标基因和内标基因扩增效率比较一致★ 不做标准曲线,高通量检测 目标基因和内标基因扩增效率的快速检测 通过并列跑两条扩增曲线,查看指数增长期的曲线之间是否平行 验证试验 目的基因和内参基因扩增效率一致性检测 检测目标基因与内标基因在不同稀释浓度下的ΔC(t),以稀释倍数与ΔC(t)作图,当直线的斜率近似于0(绝对值要小于0.1)时,说明目标基因与内标基因扩增效率一致。 问题与解决 为保证扩增效率一致 扩增子长度 引物设计 模板纯度、复杂度等 反应条件 定量PCR实验实例分析 利用TaqMan法研究ERBB2 在正常或乳腺肿瘤组织标本中的表达差异(相对标准曲线法) 已知在50%的乳腺肿瘤样本中,ERBB2表达异常,因此可以作为一个检测标准 选用GAPDH作为内标基因 FAM标记的ERBB2探针 VIC标记的GAPDH探针 构建标准曲线 双重PCR反应 阴性对照 无RNA对照(空白) 无逆转录酶对照(基因组) 标准曲线 样品扩增:正常vs肿瘤 实验结果 实验结果 ( 2-ΔΔc(t) 法) ΔΔC(t)=4.41-5.18=-0.77±0.18 2-ΔΔc(t) =1.51-1.93 结果与双标准曲线法相近 实时定量PCR常见故障排查 故障排查---软件界面 扩增曲线 标准曲线 原始数据 扩增曲线 异常扩增曲线 扩增曲线 基线设置是否正确 基线校准 基线开始值(3-10) 基线终止值(指数期之前) 阈值设置是否正确 设置在指数增长期(可自动或手动设置) 标准曲线 原始数据 常见问题 抑制物 PCR前 精密度差 扩增曲线异常 PCR后 标准曲线差 抑制物 PCR抑制物 多糖类、有机溶剂、蛋白酶K等 样本质量 A260/A280----DNA:≥1.8 ----RNA:≥2.1 RT反应中的抑制物 ----RNA标准曲线 PCR抑制物 样本质量 RNA标准曲线 精密度差 精密度低的原因 加样误差 操作、移液器、反应液未混匀 体系配置方法 低拷贝数的样品(泊松分布) 没有使用ROX校准 扩增曲线异常—平台期低 扩增曲线异常—指数增长期异常 扩增曲线异常—曲线不光滑 标准曲线评价 标准曲线差 定量PCR的新运用 等位基因分型(SNP研究) MicroRNA分析 基因拷贝数(CNV)分析 蛋白质分析

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